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          生物知識

          細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)

          作者:admin 來源:本站 發(fā)布時間: 2014-07-05 15:29  瀏覽次數(shù):
          購買進(jìn)口儀器、試劑和耗材——就在始于2001年的畢特博生物 kjhfd.cn

           

           

          一、細(xì)胞培養(yǎng)基本概念

          細(xì)胞培養(yǎng)是指從體內(nèi)組織取出細(xì)胞摹擬體內(nèi)出現(xiàn)環(huán)境,在無菌、適當(dāng)溫度及酸堿度和一定營養(yǎng)條件下,使期生長繁殖,并維持其結(jié)構(gòu)和功能的一種培養(yǎng)技術(shù)。細(xì)胞培養(yǎng)的培養(yǎng)物為單個細(xì)胞或細(xì)胞群。

          在醫(yī)學(xué)遺傳學(xué)研究中應(yīng)用最廣泛的是外周血淋巴細(xì)胞、皮膚或纖維細(xì)胞和各種能在體外長期生長的細(xì)胞系。外周血淋巴細(xì)胞培養(yǎng)具有時間短、技術(shù)簡便、可重復(fù)取材等優(yōu)點,它在臨床染色體分析中使用最廣泛。體外培養(yǎng)細(xì)胞株可在培養(yǎng)過程中發(fā)生自發(fā)的或在外界作用下的轉(zhuǎn)化,成為永久細(xì)胞系,也可直接建成永久細(xì)胞系,永久細(xì)胞系能在體外無取制的傳代和生長。永久細(xì)胞系通常具有非整倍體細(xì)胞和各個細(xì)胞的核型不完全相同特征。但細(xì)胞克隆的細(xì)胞系其這一特征可以不明顯。

          二、細(xì)胞培養(yǎng)的環(huán)境

          細(xì)胞在體外培養(yǎng)中所需的條件與體內(nèi)細(xì)胞基本相同。

          1、無污染環(huán)境

          培養(yǎng)環(huán)境無毒和無菌是保證細(xì)胞生存的首要條件。當(dāng)細(xì)胞放置于體外培養(yǎng)時,與體內(nèi)相比細(xì)胞丟失了對微生物和有毒物的防御能力,一旦被污染或自身代謝物質(zhì)積累等,可導(dǎo)致細(xì)胞死亡。因此在進(jìn)行培養(yǎng)中,保持細(xì)胞生存環(huán)境無污染、代謝物及時清除等,是維持細(xì)胞生存的基本條件。

          2、恒定的溫度

          維持培養(yǎng)細(xì)胞旺盛生長,必須有恒定適宜的溫度。人體細(xì)胞培養(yǎng)的標(biāo)準(zhǔn)溫度為36.5℃±0.5℃,偏離這一溫度范圍,細(xì)胞的正常代謝會受到影響,甚至死亡。培養(yǎng)細(xì)胞對低溫的耐受力較對高溫強,溫度上升不超過39℃時,細(xì)胞代謝與溫度成正比;人體細(xì)胞在39-40℃1小時,即能受到一定損傷,但仍有可能恢復(fù);在40-41℃1小時,細(xì)胞會普遍受到損傷,僅小半數(shù)有可能恢復(fù);41-42℃1小時,細(xì)胞受到嚴(yán)重?fù)p傷,大部分細(xì)胞死亡,個別細(xì)胞仍有恢復(fù)可能;當(dāng)溫度在43℃以上1小時,細(xì)胞全部死亡。

          3、氣體環(huán)境

          氣體是人體細(xì)胞培養(yǎng)生存必需條件之一,所需氣體主要有氧氣和二氧化碳。氧氣參與三羧酸循環(huán),產(chǎn)生供給細(xì)胞生長增殖的能量和合成細(xì)胞生長所需用的各種成分。開放培養(yǎng)時一般把細(xì)胞置于95%空氣加5%二氧化碳混合氣體環(huán)境中。

          二氧化碳既是細(xì)胞代謝產(chǎn)物,也是細(xì)胞生長繁殖所需成分,它在細(xì)胞培養(yǎng)中的主要作用在于維持培養(yǎng)基的PH值。大多數(shù)細(xì)胞的適宜PH為7.2-7.4,偏離這一范圍對細(xì)胞培養(yǎng)將產(chǎn)生有害的影響。但細(xì)胞耐酸性比耐堿性大一些,在偏酸環(huán)境中更利于細(xì)胞生長。有資料顯示,原代羊水細(xì)胞培養(yǎng)PH6.8時最適。

          細(xì)胞培養(yǎng)液PH濃度的調(diào)節(jié)最常用的為加NaHCO3的方法,因為NaHCO3可供CO2,但二氧易于逸出,故最適用于封閉培養(yǎng),而羥乙基哌嗪乙硫磺酸(HEPES)因其對細(xì)胞無毒性,也起緩沖作用,有防止PH迅速變動的特性而用于開放細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)中,其最大優(yōu)點是在開放式培養(yǎng)或細(xì)胞觀察時能維持較恒定的PH值。

          4、細(xì)胞培養(yǎng)基

          培養(yǎng)是既是培養(yǎng)細(xì)胞中供給細(xì)胞營養(yǎng)和促使細(xì)胞生殖增殖的基礎(chǔ)物質(zhì),也是培養(yǎng)細(xì)胞生長和繁殖的生存環(huán)境。培養(yǎng)基的種類很多,按其物質(zhì)狀態(tài)分為半固體培養(yǎng)基和液體培養(yǎng)基兩類;按其來源分為合成培養(yǎng)基和天然培養(yǎng)基。

          (1)合成培養(yǎng)基:合成培養(yǎng)基是根據(jù)細(xì)胞所需物質(zhì)的種類和數(shù)量嚴(yán)格配制而成的。內(nèi)含碳水化合物、氨基酸、脂類、無機鹽、維生素、微量無素和細(xì)胞生長因子等。單獨使用細(xì)胞雖有生存但不能很好的生長增殖。

          (2)天然培養(yǎng)基:使用最普遍的天然培養(yǎng)基是血清,基本以小牛血清最普遍。血清由于含有多種細(xì)胞生長因子、促貼附因子及其多活性物質(zhì)。與合志培養(yǎng)基合用,能使細(xì)胞碩利增殖生長。常見使用最為5-20%。

          三、細(xì)胞培養(yǎng)設(shè)施和基本條件

          1、實驗室設(shè)計

          細(xì)胞培養(yǎng)是一種無菌操作技術(shù),要求工作環(huán)境和條件必須保證無微生物污染和不受其它有害因素的影響。細(xì)胞培養(yǎng)室和設(shè)計原則是防止微生物污染和有害因素影響,要求工作環(huán)境清潔、空氣清新,干燥和無煙塵。細(xì)胞培養(yǎng)工作包括:工作液配制、無菌操作(采樣)、溫育、無菌處理,細(xì)胞和用品貯存等。細(xì)胞培養(yǎng)室的設(shè)計實施原則一般是無菌操作區(qū)設(shè)在室內(nèi)較少走動的內(nèi)側(cè),常規(guī)操作和封閉培養(yǎng)于一室,而洗刷消毒在另一室。

          2、常用設(shè)施及設(shè)備

          (1)超凈工作臺:也稱凈化工作臺,分為側(cè)流式、直流式和外流式三大類。

          (2)無菌操作間:一般由更衣間、緩部間和操作間三部分組成。操作間放置凈化工作臺及二氧化碳培養(yǎng)箱、離心機、倒置顯微鏡等。緩沖間可放置電冰箱、冷藏器及消毒好的無菌物品等。

          (3)操作間:普通培養(yǎng)箱、離心機、水浴鍋、定時鐘、普通天平及日常分析處理物品。

          (4)洗刷消毒間:烤箱、消毒鍋、蒸餾水處理器及酸缸等。

          (5)分析間:顯微鏡、計算機及打印機等。

          3、培養(yǎng)器皿

          細(xì)胞培養(yǎng)以玻璃器皿為主,常準(zhǔn)備最需是使用最的三倍。器皿應(yīng)選擇透明度好、無毒、中性硬度玻璃制品。常用的玻璃器皿有下面幾種。

          (1)液體儲存瓶:用于儲存各種配制好的培養(yǎng)液、血清等液體,常以500ml、250ml、100ml生理鹽水瓶或血漿瓶代替。

          (2)培養(yǎng)瓶:根據(jù)培養(yǎng)細(xì)胞種類要求不同培養(yǎng)瓶的形態(tài)各異,用于細(xì)胞傳代培養(yǎng)的細(xì)胞要求瓶壁厚簿均勻,便于細(xì)胞貼壁生長和觀察,瓶口要大小一致,口徑一般不小于1cm,允許吸管伸入瓶內(nèi)任何部位,規(guī)格有200ml、100ml、50ml、25ml、10ml等幾種。用于外周血培養(yǎng)的常用10ml普通圓瓶。兩種培養(yǎng)瓶均要求選用優(yōu)質(zhì)玻璃制成。

          (3)培養(yǎng)皿:用于開放式培養(yǎng)及其它用途。分直徑30mm、60mm、120mm等幾種。

          (4)吸管:常用的有長吸管和短吸管兩類,長吸管也稱刻度吸管。其改良后管上部有球型刻度稱改良吸管,刻度吸管用于移動液體。常用1ml和10ml兩種。短吸管也叫滴管,分彎頭和直頭兩種。

          (5)離心管:離心管是細(xì)胞培養(yǎng)中使用最廣泛的器皿,根據(jù)用途不同形態(tài)各樣,常用于細(xì)胞培養(yǎng)的離心管有大腹式尖底離心管和普通尖底離心管兩類。前者分別為50ml、30ml、15ml;后者則多為10ml和5ml。

          (6)其它:如三角燒瓶、燒杯、量筒、漏斗、注射器等。

          四、培養(yǎng)細(xì)胞形態(tài)

          體外培養(yǎng)細(xì)胞根據(jù)它們在培養(yǎng)器皿是否能貼附于支持物上生長特征,可分為貼附型生長和懸浮型生長兩大類。貼附型細(xì)胞在培養(yǎng)時能貼附在支技物表面生長。如羊水細(xì)胞為貼附型細(xì)胞,常表現(xiàn)為成纖維型細(xì)胞和上皮細(xì)胞生長。懸浮型細(xì)胞在培養(yǎng)中懸浮生長。

          1、成纖維型細(xì)胞

          在培養(yǎng)中的細(xì)胞凡形態(tài)與成纖維細(xì)胞類似時,皆可稱之為成纖維細(xì)胞。本型細(xì)胞由形態(tài)與體內(nèi)成纖維細(xì)胞的形態(tài)相似而得名,細(xì)胞在支持物表面呈梭形或不規(guī)則三角形生長,細(xì)胞中央有卵園形核,胞質(zhì)向外伸出2-3厘米個長短不同的突起,除真正的成纖維細(xì)胞外,凡由中胚層間質(zhì)起源的組織細(xì)胞常呈本類形態(tài)生長。

          2、上皮型細(xì)胞

          此類型細(xì)胞在培養(yǎng)器皿支持物上生長具有扁平不規(guī)則多角形特征,細(xì)胞中央有園形核,細(xì)胞緊密相連單層膜樣生長。起源于內(nèi)、外胚層細(xì)胞如皮膚、表皮衍生物、消化管上皮等組織細(xì)胞培養(yǎng)時,皆呈上皮型形態(tài)生長。

          3、游走型細(xì)胞

          本型細(xì)胞在支持物上散在生長,一般不連成片。細(xì)胞質(zhì)經(jīng)常伸出偽足或突起,呈活躍的游走或變形運動,速度快且不規(guī)則。此型細(xì)胞不很穩(wěn)定,有時亦難和其它型細(xì)胞區(qū)別。在一定的條件下,由于細(xì)胞密度增大聯(lián)成片后,可呈類似多角型或成纖維細(xì)膩包形態(tài)。常見于羊水細(xì)胞培養(yǎng)的早期。

          五、培養(yǎng)細(xì)胞形態(tài)分析

          培養(yǎng)細(xì)胞隨貼附支持物形狀不同而形態(tài)各異,最常見的是貼附于平面支持物細(xì)胞。在一般光鏡下生存中的細(xì)胞是均質(zhì)而透明的,結(jié)構(gòu)不明顯。細(xì)胞在生長期常有1-2個核仁在細(xì)胞機能狀態(tài)不良時,細(xì)胞輪廓會增強,反差增大。若胞質(zhì)中時而出現(xiàn)顆粒、脫滴和腔泡等,表明細(xì)胞代謝不良。

          六、培養(yǎng)用品的清洗與消毒

          目前我國細(xì)胞培養(yǎng)器皿主要仍使用能反復(fù)使用的玻璃器皿,清洗的主要目的為清除雜質(zhì)和微生物,使在器皿內(nèi)不殘留任何影響細(xì)胞生長的成份。因而在組織細(xì)胞培養(yǎng)中清洗和消毒是一項極為重要的環(huán)節(jié)。

          (一) 清洗

          在組織細(xì)胞培養(yǎng)中,體外細(xì)胞對任何有害物質(zhì)都非常敏感。微生物產(chǎn)品附帶雜物,上次細(xì)胞殘留物及非營養(yǎng)成分的化學(xué)物質(zhì),均能影響培養(yǎng)細(xì)胞的生長。因此對新使用和重新使用的培養(yǎng)器皿都要嚴(yán)格徹底的清洗,且要根據(jù)器皿的組成材料不同,選擇不同的清洗方法。

          1、玻璃器皿的清洗

          組織細(xì)胞培養(yǎng)中,使用量最大的是玻璃器皿,故工作最最大的是玻璃器皿的清洗。一般玻璃器皿的清洗包括浸泡、刷洗、侵酸和沖洗四個步驟。清洗后的玻璃器皿僅要求干凈透明無油跡,而且不能殘留任何物質(zhì)。

          (1)浸泡:初次使用和培養(yǎng)使用后的玻璃器皿均需先用清水浸泡,以使附著物軟化或被溶液掉。新的初次使用的玻璃器皿,在生產(chǎn)及運輸過程中,玻璃表面帶有大量的干固的灰塵,且玻璃表面常呈堿性及帶有一些對細(xì)胞有害的物質(zhì)等。新瓶使用前應(yīng)先用自來水簡單刷洗,然后用稀鹽酸液(5)浸泡過夜,以中和其中的堿性物質(zhì)。再次使用的玻璃器皿則常附有大量剛使用過的蛋白質(zhì),干固后不易洗掉,故用后要立即浸入水中,且要求完全浸入,不能留有氣泡或浮在液面上。

          (2)刷洗:浸泡后的玻璃器皿一般要用毛刷沾洗滌劑刷洗,以除去器皿表面附著較牢的雜質(zhì)。刷洗要適度,過度會損害器皿表面光澤度。

          (3)浸酸:清潔液是由重鉻酸鉀、濃硫酸和蒸餾水按一定比例配制而成,其處理過程稱為浸酸。清潔液對玻璃器皿無腐蝕作用,而其強氧化作用可除掉刷洗不掉的微量雜質(zhì)。清潔液去污能力很強。是清洗過程中關(guān)鍵的一環(huán)。浸泡時器皿要充滿清潔液,勿留氣泡或器皿露出清潔液面。浸泡時間一般為過夜,不應(yīng)少于6小時。 清潔液可根據(jù)需要,配制成不同的強度,常用的下列三種: 重鉻酸鉀(g) 濃硫酸(ml) 蒸餾水(ml) (A)強清潔液 63 1000 200000 B)次強清洗液 120 200 1000 (C)弱清潔液 100 100 100

          清潔液配制時應(yīng)注意安全,須穿戴耐酸手套和圍裙,并要保護好面部及身體裸露部分。配制過程中可使重鉻酸鉀溶于水中,然后慢慢加濃硫酸。并不停的用玻璃棒攪拌,使產(chǎn)生的熱量揮發(fā),配制過程中可使重鉻酸鉀溶于水中,然后慢慢加濃硫酸。并不停的用玻璃棒攪拌,使產(chǎn)生的熱量揮發(fā),配制溶液應(yīng)選擇塑料制品。配成后清潔液一般為棕紅色。

          (4)沖洗:玻璃器皿在使用后,刷洗及浸泡后都必須用水充分沖洗。使之盡量不留污染或潔液的殘跡。沖洗最好用洗滌裝置。即省力、效果又好。如用手工操作,則需流水沖洗十次以上,每天水須灌滿及倒干凈,最好用蒸餾水清洗3-5次,晾干備用。

          2、膠塞的清洗

          細(xì)胞培養(yǎng)中所用的橡膠制品主要是瓶塞。新購置的瓶塞帶有大量滑石粉及雜質(zhì),應(yīng)先用自來水沖洗,再做常規(guī)處理,常規(guī)清洗方法是:每次用后立即置入水中浸泡,然后用2% NaOH或洗衣粉煮沸10-20分鐘,以除掉培養(yǎng)中的蛋白質(zhì)。自來水沖洗后,再用1%稀鹽酸浸泡30分鐘或蒸餾水沖洗后再煮沸10-20分鐘,晾干備用。

          3、塑料制品的清洗

          塑料自制品現(xiàn)多是采用無毒并已經(jīng)特殊處理的包裝,打開包裝即可用,多為一次性物品。必要時用2% NaOH浸泡過夜,用自來水充分沖洗,再用5%鹽酸溶液浸泡30分鐘,最后用自來水和蒸餾水沖洗干凈,晾干備用。

          (二)消毒

          細(xì)胞培養(yǎng)的最大危險是發(fā)生培養(yǎng)物的細(xì)菌,真菌和病毒等微生物的污染,污染主要是由于操作者的疏忽而引起,常見的原因有操作間或周圍空間的不潔,培養(yǎng)器皿和培養(yǎng)液消毒不合格或不徹底,由于有關(guān)培養(yǎng)的每個環(huán)節(jié)的失誤均能導(dǎo)致培養(yǎng)失敗,故細(xì)胞培養(yǎng)的每個環(huán)節(jié)都應(yīng)嚴(yán)格遵守操作常規(guī),防止發(fā)生污染。

          消毒方法分為三類: (A) 物理滅菌法(紫外線、濕熱、過渣等)。(B) 化學(xué)滅菌法(各種化學(xué)消毒劑)。(C) 抗生素。

          (1)紫外線消毒:用于空氣,操作臺表面和不能使用其它法進(jìn)行消毒和培養(yǎng)器皿。紫外線直接照射方便、效果好,經(jīng)一定的時間照射后,可以消滅空氣中大部分細(xì)菌,培養(yǎng)室紫外線燈應(yīng)距地面不超過2.5米,且消毒進(jìn)物品不宜相互遮檔,照射不到的地方起不到消毒作用。

          紫外線可產(chǎn)生臭氧,污染空氣,試劑及培養(yǎng)液都有不良影響,對人皮膚也有傷害,不宜近照射也進(jìn)行實驗操作。

          (2)溫?zé)嵯荆杭锤邏赫魵庀?,是一種使用最廣泛、效果最好的消毒方法。溫?zé)嵯緯r,消毒物品不能裝得過滿,以防止消毒器內(nèi)氣體阻塞而千百萬危險,保證其內(nèi)氣體的流通。在加熱升壓之前,先要打開排氣閥門排放消毒器內(nèi)的冷空氣,冷氣空氣排出后,關(guān)閉排氣閥門,同時檢驗安全閥活動自如,繼后開始升壓,當(dāng)達(dá)到所需壓力時,開始記算消毒時間。消毒過程中,操作者不能離開工作崗位,要定時檢查壓力及安全,防止消毒及表皮意外事件發(fā)生。

          常用物品消毒壓力及時間:

          培養(yǎng)液、橡膠制品、10磅10分鐘;

          布類、玻璃制品、金屬器械、18磅20分鐘。

          上兩種是最常見的物理消毒方法。

          (3)化學(xué)消毒法:最常見的是70%酒精及1‰的新潔而滅,前者主要用于操作者的皮膚,操作臺表面及無菌室內(nèi)的壁面處理。后者則主要用器械的浸泡及皮膚和操作室壁面的擦試消毒?;瘜W(xué)消毒法操作簡單、方便有效。

          (4)抗生素消毒:確切應(yīng)記成抗生素滅菌,主要用于培養(yǎng)用液滅菌或預(yù)防培養(yǎng)物污染。

          七、絨毛染色體制備

          絨毛來源于胚胎的中胚層,最早的初級干絨毛出現(xiàn)于孕三周初,孕8周左右是絨毛發(fā)育最旺盛時期。目前國內(nèi)外絨毛取材多選于8-9周。研究資料表明,絨毛取樣不影響胚胎的發(fā)育及胎盤的功能。但取樣的失敗可導(dǎo)致胚胎丟失而終止妊娠。

          絨毛取樣前者首先要檢查陰道分泌物以判別陰道的潔凈度,防止取樣導(dǎo)致宮內(nèi)感染。其次需做B超檢查,一是確定胚胎大小,二是確定胚芽有無心血管搏動,三是確定胚芽在子宮內(nèi)的位置,用以判別取材時間,是否取材及取樣器進(jìn)宮的角度及深度。

          1、實驗材料

          婦科陰道沖洗物品、絨毛取樣器、5ml注射器、培養(yǎng)皿、小鑷子、5ml離心管、甲酸、檸檬酸鈉、冰乙酸、PMRI 1640、秋水仙素、載玻片等。

          2、培養(yǎng)液配制

          PRMI 1640 10-15ml

          秋水仙素10ug/ml 1ml

          3、 操作過程

          (1)1‰新潔而滅沖洗陰道,用卵圓鉗固定子宮頸,根據(jù)婦查及B超提示選擇角度及濃度探性插入絨毛取樣器,當(dāng)有彈性阻擋感且深度符合B超所示時,抽出取樣器內(nèi)芯,接上5ml注射器,抽出4-5ml,此時,注射器內(nèi)可見有血性液體流進(jìn);

          (2)取一干凈培養(yǎng)皿,內(nèi)加PRNI 1640 5ml,內(nèi)含秋水仙素0.06ug/ml。慢慢抽出取樣器,將所吸出物注入培養(yǎng)皿內(nèi),并用1640沖洗注射器及取樣器,混勻。置培養(yǎng)箱30-40分鐘;(3)挑選發(fā)育良好的絨毛放入另一小培養(yǎng)皿中,用預(yù)溫37℃的0.075M。KCL與10%檸檬酸鈉1∶1混合液漂洗兩次。(4)用眼科小剪剪碎絨毛,再將2滴秋堿加入上途漂洗低滲液低滲30分鐘;(5)加3∶2的甲醇冰乙酸固定液0.2ml,預(yù)固定,1000rpm8分鐘,棄上清液;(6)加新鮮配制的3∶2固定液3ml;固定30分鐘,2000rpm8分鐘,棄上清液;(7)第二次固定可加3∶1甲醇冰乙酸固定液3ml固定30分鐘,2000rpm8分鐘,棄上清液;(8)離心后,加所余體積的60%冰乙酸,打勻,2分鐘后加等量甲醇,打勻,2000rpm8分鐘,棄上清液。(9)3m1 3∶1甲冰固定液過夜,冰水制片;(10)80℃考片2小時,自然冷卻。(11)G分帶處理,觀片。

          八、羊水細(xì)胞培養(yǎng)

          羊水中含有胎兒脫落的上皮細(xì)胞,可在體外培養(yǎng)用以分析胎兒染色體核型。目前國內(nèi)外大都采用腹腔羊膜穿刺術(shù),妊娠12-30周的羊水細(xì)胞均可培養(yǎng)成功。羊膜腔穿刺取羊水行染色體分析,最佳孕周為16周左右。因此時羊水增長快,羊水中細(xì)胞較多,細(xì)胞培養(yǎng)易于生長,而且不易損傷胎兒。國內(nèi)多數(shù)選擇的穿刺時間在妊娠的第16-30周。國外現(xiàn)已較多地采用妊娠早期的羊膜穿刺,但需在B超下定位及穿刺。羊水量按妊娠時間大致計算(1ml/w)。資料表明,穿刺病例的妊娠結(jié)局、分娩方式、胎兒的出生體重等與未穿刺無明顯差異。

          1、實驗材料

          2.5%碘酒、75%酒精、無菌棉簽和棉球、鑷子、20-22號無菌腰穿針、吸管、培養(yǎng)瓶、培養(yǎng)液(PRMI 1640、199、F10、F12)、小牛血清、秋水仙素、KCL、甲醇、冰醋酸、培養(yǎng)皿、蓋玻片等。

          2、培養(yǎng)液配制

          F-12 85%

          小牛血清 15%

          雙抗 100u/ml

          小瓶貯藏 4-8℃

          3、操作過程

          A(蓋玻片培養(yǎng)法)

          (1)采樣:選擇妊娠13-14周婦女,在無菌條件下抽取羊水5ml,立即注入無菌離心管中;(2)收集:離心分離細(xì)胞,1000rpm10分鐘,去上清,留0.5ml,輕打混勻;(3)接種:30mm培養(yǎng)皿中放蓋玻片1張,每片滴混勻的細(xì)胞液1-2滴,置培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)30-60分鐘;(4)培養(yǎng):取出后從蓋玻片外加培養(yǎng)液2ml,靜置培養(yǎng)48小時后觀察細(xì)胞生殖狀況并定時換液,5-10天后,可見大量成纖維細(xì)胞或上皮樣細(xì)胞生長;(5)終止培養(yǎng):當(dāng)有大量圓形發(fā)亮細(xì)胞出現(xiàn)時,加秋水仙素0.02-0.04ug/ml,作用10-12小時;(6)低滲:倒掉培養(yǎng)液,加預(yù)溫37℃0.075MKCL溶液5ml,37℃溫育30分鐘,鏡下可見脹大的羊水細(xì)胞,加0.5-1ml 3∶1甲醇:冰醋酸固定液預(yù)固定;(7)固定:倒掉低滲液,加5ml固定液固定30分鐘以上,反復(fù)3次;(8)干燥:將附有細(xì)胞的蓋玻片斜放于培養(yǎng)皿中,置80℃烤箱處理2-3小時;(9)膠片:將附有細(xì)胞的蓋玻片用樹脂膠封固于玻片上,正面朝外,小心細(xì)胞破壞;

          B(常規(guī)培養(yǎng)法)

          (1)—(2)相同于蓋玻片培養(yǎng)法;(3)接種:將混勻的羊水細(xì)胞種置于50ml或100ml細(xì)胞培養(yǎng)瓶內(nèi),平均10ml羊水細(xì)胞收集的細(xì)胞種置一瓶加5-10ml混合培養(yǎng)液。(4)培養(yǎng):酒精燈火先封口,靜置培養(yǎng)48小時后觀察細(xì)胞貼臂及生長情況,5-10天后可見瓶底面有大量羊水細(xì)胞生長;(5)終止培養(yǎng):同A法;(6)細(xì)胞收集:將培養(yǎng)液倒入一干凈離心管中,加0.025%的胰蛋白酶0.5-1ml/瓶,輕輕搖動,使培養(yǎng)瓶底面完全接觸消化酶,然后用彎頭吸管吹打,待細(xì)胞全部脫落后加前培養(yǎng)液終止胰蛋白酶消化。用吸管移細(xì)胞懸液于離心管中。1000-2000rpm10分鐘,棄上清,留細(xì)胞沉慮。若一次消化不徹底,可反復(fù)消化;(7)低滲及預(yù)固定:加預(yù)溫37℃KCL溶液10ml,37℃溫育30分鐘,加0.5-1ml新鮮配制的3∶1甲醇冰乙酸固定液預(yù)固定,用氣泡吹打細(xì)胞使其混勻。(8)固定:用新鮮配制的3∶2甲冰固定三次,每次30分鐘。固定液加入時沿管壁緩慢加入;(9)制片及干燥:用絨毛制片;(10)分帶處理。

          九、人外周血淋巴細(xì)胞培養(yǎng)

          在正常情況下,人外周血中是沒有分裂相的,只有在異常情況下才能發(fā)現(xiàn)。植物血球凝集素(PHA)是人類淋巴細(xì)胞有絲分裂的刺激劑,在PHA作用下,原處于Go期的淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化為淋巴母細(xì)胞,進(jìn)而進(jìn)行有絲分裂。利用PHA這一特性,淋巴細(xì)胞經(jīng)過含有HPA培養(yǎng)液培養(yǎng),在體外便可獲得豐富的含有絲分裂的生長活躍的細(xì)胞群體,終止分裂中期的淋巴細(xì)胞,例可得到所需的人體染色體圖形。具有用血量少、操作簡單等優(yōu)點。

          1、實驗材料

          2.5%碘酒、75%酒精、無菌棉簽或棉球、鑷子、吸管、培養(yǎng)瓶、培養(yǎng)液(PRMI 1640、M199)、小牛血清、秋水仙素、KCL、甲醇、冰醋酸、載玻片等。

          2、培養(yǎng)液配制

          無菌條件下配制培養(yǎng)液,每瓶所含下列試劑:

          RPMI 1640或199 90%

          小牛血清 10%

          PHA(自制) 0.1ml 3%

          肝素 10u/ml 2%

          雙抗 100u/ml(選擇)

          分裝于10ml培養(yǎng)瓶內(nèi),每瓶5ml培養(yǎng)液,封口置冷藏柜備用。

          3、操作過程

          (1)采樣接種:用2.5%碘酒、75%酒精消毒瓶蓋,用酒精燈火焰過烤,無菌條件下抽取患者外周血0.5-1ml,每瓶加20滴左右,輕搖均勻,盡量避免培養(yǎng)物與瓶蓋接觸;(2)培養(yǎng):置36℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)72小時,每隔12小時左右輕遙1次,以促進(jìn)細(xì)胞生長增殖;(3)抑止分裂:收獲前2小時左右加秋水仙素,最終濃度為0.02ug/ml培養(yǎng)液,搖勻后置培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng),以抑止細(xì)胞在分裂中期。(4)終止培養(yǎng):從培養(yǎng)箱中取出培養(yǎng)瓶,搖勻后移至10ml尖底離心管中,盡量收集培養(yǎng)細(xì)胞。2000rpm8分鐘。(5)低滲處理:棄上清液,加入預(yù)溫37℃的0.075MKCL8ml,迅速打勻,置37℃培養(yǎng)箱或水浴鍋中10-20分鐘;(6)預(yù)固定:取出低滲中尖底離心管,輕輕加入新配制的1-2ml 3∶2甲醇:冰乙酸混合液,取相應(yīng)編號滴管用汽泡輕輕軟打2-3下。800-1000rpm8-10分鐘;(7)固定:棄上清液。加入新鮮配制的3∶2甲醇冰乙酸混合液10ml,輕打混勻,封口置室溫30分鐘以上。1500-2000rpm10分鐘,反復(fù)2-3次;(8)制片:使用蒸餾水制備冰水片進(jìn)行滴片。留離心后沉淀細(xì)胞,加新鮮配制的固定液,制成細(xì)胞懸液,取1-2滴滴片,用于輕輕吹開??烫柡笄謇砜烫栁畚?,置80℃烤片2小時;(9)收片:待烤箱自然冷卻后,取出烤片,置干凈環(huán)境中或培養(yǎng)箱中以備進(jìn)行顯帶處理。

          十、植物油凝素的制備

          植物血凝素也稱為植物凝集素(PHA),可自制也可購自商品。自制的方法常用生理鹽水提取法。

          (A)干品制備法(1)選廣東雞子豆10g,用蒸餾水沖洗,置培養(yǎng)皿內(nèi)用75%酒精一次性浸洗,倒掉酒精留間隙置37℃。恒溫箱內(nèi)24-48小時;(2)在無菌條件下研碎雞子豆,加生理鹽水30ml,搖勻后放入4℃冰箱24小時,第二天再加生理鹽水70ml,再置4℃冰箱內(nèi)24小時。每8-12小時搖蕩一次。(也可一次性加100ml生理鹽水);(3)無菌條件下移入10-50ml離心管內(nèi),3000-4000rpm30分鐘。在無菌箱內(nèi)把上清液分裝于10ml小瓶,置冰箱冷凍層備用;(4)效價:外周血染色體制備每100ml培養(yǎng)基加PHA約2ml。注:若整個過程未在無菌條件下進(jìn)行,分裝時用G5玻砂漏斗除菌即可。

          (B)鮮品制備法:(1)選擇完整無破皮鮮菜豆20g,用75%酒精浸泡10分鐘;(2)在凈化工作中用無菌鹽水或蒸餾水漂洗二次,然后置無菌乳缽中搗成糊狀,用100ml無菌鹽水浸泡封口;(3)移入4℃冰箱中置24小時,中間搖動數(shù)次,次日3000rpm30分鐘,在無菌情況下分裝上清液于10ml小瓶內(nèi),置冰箱冷凍層備用。(4)效價:正式使用前先用一定量作效價測定,按效價使用。

          十一、組織培養(yǎng)細(xì)胞染色體制備

          組織細(xì)胞用于遺傳學(xué)分析最常見的是體外培養(yǎng)的細(xì)胞株,多為惡性腫瘤細(xì)胞株,且呈貼壁生長,僅小數(shù)細(xì)胞株為懸浮生長。培養(yǎng)細(xì)胞有來源易得、細(xì)胞分裂率高和染色體標(biāo)本制出清晰度高等優(yōu)點。組織細(xì)胞染色體制備的關(guān)鍵是掌握好體外細(xì)胞的生長動態(tài),只有處在對數(shù)生長期的細(xì)胞才能出現(xiàn)較高的分裂相,所以積水仙素處理的時機及量是染色體標(biāo)本形態(tài)及分裂指數(shù)的關(guān)鍵。

          1、實驗材料

          培養(yǎng)液(PRMI 1640、M199、DMEM等),小牛血清、0.025%胰蛋酶、秋水仙素,刻度離心管,直吸管及彎頭吸管,培養(yǎng)瓶或皿、KCL、甲醇、冰乙酸、載玻片。

          2、培養(yǎng)液配制

          培養(yǎng)液 85-95%

          小牛血清 5-15%

          雙抗(選擇) 100u/ml

          3、操作過程

          (1)培養(yǎng)細(xì)胞:選擇處于指數(shù)生長期、用大瓶培養(yǎng)的80-90%匯合單層培養(yǎng)細(xì)胞;

          (2)終止培養(yǎng):當(dāng)有大量圓形發(fā)亮細(xì)胞出現(xiàn)時,加秋水仙素0.01-0.03ug/ml培養(yǎng)混合液,置溫箱繼續(xù)培養(yǎng)6-10小時以抑制分裂期細(xì)胞停止于分裂中期;(3)聚集細(xì)胞:

          (A) 搖動法:

          可利用分裂中期細(xì)胞變圓與底物附著不牢特點,此時可持培養(yǎng)瓶,左右反復(fù)橫向水平搖動,可使90%的中期分裂細(xì)胞從瓶壁脫落;

          (B) 消化法:

          將培養(yǎng)液倒入離心管內(nèi),給培養(yǎng)瓶內(nèi)加0.025%胰蛋白酶液0.5-1ml/瓶,水平左右搖動,便培養(yǎng)瓶底壁面完全接觸消化酶,稍后用彎頭吸管吹打,待細(xì)胞完全脫落后,加入3-5ml前培養(yǎng)終止消化。用吸管移入裝有培養(yǎng)液的離心管內(nèi)2000rpm10分鐘。棄上清液,留沉淀細(xì)胞;

          (4)低滲處理:給沉淀細(xì)胞加頂溫的37℃0.075MKCL8ml左右,用吸管打均勻,在溫箱中靜置20-30分鐘;

          (5)預(yù)固定:向低滲處理適當(dāng)?shù)碾x心管中加新鮮配制的3∶2甲醇,冰乙醇固定液1-2ml,用吸管輕松吹打調(diào)勻,此措施能起到使細(xì)胞表面輕微固定,可防止固定后細(xì)胞粘連成塊。

          (6)固定:800-1000rpm10分鐘,棄上清液加新鮮配制的3∶2甲醇冰乙酸固定液10ml,加入時要沿管壁慢慢加入,后輕輕吹打,封口后室溫靜置30分鐘以上,反復(fù)三次;

          (7)制片:末次離心后,倒掉上清液,留沉淀細(xì)胞,加新鮮配制固定液0.5ml左右,混勻后冰片制片,其它同外周血方法。

          十二、胸腹水細(xì)胞染色體制備

          在惡性腫瘤的胸腹水中有大量的分裂期細(xì)胞,其中多以非整倍體細(xì)胞存在,并含有各種標(biāo)記染色體。

          1、實驗材料

          2.5%碘精、75%酒精、無菌棉球、鑷子20-22號無菌腰穿包、50ml離心管、秋水仙素、KCL、甲醇、冰乙酸、載玻片等。

          2、操作過程

          (1)采樣:選擇有胸或腹水患者,在無菌條件下,輕腹穿刺或于手術(shù)取胸或腹水20-50ml;

          (2)培養(yǎng):立即加入秋水仙素培養(yǎng),最終濃度為0.02-0.04ug/ml胸腹水,置37℃培養(yǎng)箱內(nèi)4-6小時;

          (3)低滲及后期制作羊水細(xì)胞。

          十三、染色體制備體會

          1、 培養(yǎng)基PH濃度、小牛血清量及培養(yǎng)箱溫度的恒定是培養(yǎng)成功關(guān)鍵;

          2、秋水仙素適量、適宜的處理時機和時間,是獲得良好、足夠分裂相的條件。分裂相的多少和染色體形態(tài)及帶型處理良好與否均受其影響。

          3、低滲處理是獲得分散良好的分裂相關(guān)鍵步驟,低滲過度或不足都會造成染色體形態(tài)不良的結(jié)果。在低滲處理時期細(xì)胞十分嬌嫩,并且表面發(fā)粘,低滲細(xì)胞混勻時,吹打要適宜,避免細(xì)胞破碎及粘團,另外不要將細(xì)胞吸到吸管上部及離心管上部,避免細(xì)胞丟失。

          4、固定技術(shù)是制備良好分散的染色體的重要步驟。若染色體分?jǐn)?shù)不良,可適當(dāng)加大冰乙酸含量,其同時有改善由于低滲處理不夠或固定不充分所造成的缺陷,但過量會造成染色體形態(tài)變化和影響分帶結(jié)局。染色體形態(tài)不良與固定液速度有關(guān),加第1次固定液過快或打過快,可造成飄帶樣染色體; 5、固定液每次使用必須新鮮配制,否則將會形成酯類,從而影響固定效果。6、滴片是染色體制備中影響染色體形態(tài)的關(guān)鍵一步。首先要載玻片要非常干凈,否則會影響染色體的分散和分帶效果。其次是滴片的距離、滴加量多少、制片的方式都會影響染色體分期效果。 7、烤片:是染色體制備中最后一步技術(shù)。烤片的溫度、時間與染色體形態(tài)和分帶有關(guān)。不宜溫度過高和烤片時間過長。

          十四、染色體實驗技術(shù)分析

          染色體分裂指數(shù)低:患者處于非常時期(感染期、放、化療期):

          培養(yǎng)基營養(yǎng)成份不良;

          培養(yǎng)基PH偏低或偏高;

          PHA過量或不足;

          小牛血清質(zhì)量不高;

          小牛血清數(shù)量偏低或過高;

          培養(yǎng)溫度不穩(wěn)定;

          培養(yǎng)箱溫度偏低;

          秋水仙素處理時間過短;

          離心時間或速度不足;

          制備過程損失過大。

          染色體形態(tài)不理想:受檢者處于非常時期;

          PHA過量;

          小牛血清質(zhì)量不高;

          培養(yǎng)箱溫度不恒溫;

          秋水仙素量不當(dāng);

          低滲時間不理想;

          低滲溫度過高;

          離心速度過高;

          固定液加速過快;

          固定混勻手法過重;

          吹片技術(shù)不良。

          染色體形態(tài)偏長: 培養(yǎng)基PH偏酸;

          秋水仙素量偏低;

          秋水仙素處理時間偏短;

          染色體形態(tài)偏短: 培養(yǎng)基PH偏堿;

          秋水仙紗處理量過量;

          秋水仙素處理時間過長。

          染色體分帶不良: 血液狀況不良;

          培養(yǎng)基營養(yǎng)成分不良;

          小牛血清質(zhì)量不高;

          小牛血清數(shù)量不當(dāng);

          培養(yǎng)箱培養(yǎng)溫度不良;

          秋水仙素處理量過高;

          PHA量過高;

          低滲處理時間或溫度不良;

          胰酶質(zhì)量不良;

          染色液質(zhì)量不良;

          染色技術(shù)不良;

          分帶技術(shù)不佳。

          染色背景不良:  培養(yǎng)細(xì)胞生長不良;

          低滲處理技術(shù)不良;

          離心過程塵染;

          分帶技術(shù)不良;

          染色技術(shù)不良;

          染色液塵染;

          載玻片處理不干凈;

          制片過程塵染;

          存片環(huán)境不干凈。

          培養(yǎng)失?。? 培養(yǎng)中損失;

          血源質(zhì)量不良;

          培養(yǎng)中感染;

          小牛血清污染;

          培養(yǎng)箱溫度失控;

          PHA過期或過量;

          秋水仙素失效;

          低滲失敗;

          離心機失誤。

          標(biāo)本損失:  培養(yǎng)中損失;

          制備中損失;

          分帶中損失;

          保存中損失;

          十五、染色體分帶技術(shù)

          染色體顯帶技術(shù)是在顯示染色體基礎(chǔ)上發(fā)展起來的技術(shù),其優(yōu)點是能顯現(xiàn)染色體本身更細(xì)微的結(jié)構(gòu),有助于更準(zhǔn)確地識別每條染色體及染色體異常疾病。染色體分帶技術(shù)能適用于各種細(xì)胞染色體標(biāo)本。

          染色體顯帶是沿著整條染色體的長軸,能顯現(xiàn)出著色深淺不同、橫向走的帶型。目前認(rèn)為染色體顯帶現(xiàn)象是染色體結(jié)構(gòu)所致。但用特殊方法處理后,再用染料染色,則帶型更加清晰,隨顯帶方法不同,顯現(xiàn)出的帶型的特點也不一樣,這說明帶的出現(xiàn)與染料的特異結(jié)合相關(guān)。人類染色體能顯現(xiàn)出近2000個G帶,這些帶再融合成一般顯微鏡下可見的850條左右的高分辯染色體帶型或350條帶左右的常規(guī)帶型。

          常見的顯帶方法:

          (一)、G帶

          也稱為G顯帶,是最常用的顯帶方法,具有操作簡便、經(jīng)濟及標(biāo)本能長期保存等優(yōu)點。

          1、Giemsa原液的配制:

          (1)稱3.75gGiemsa粉置研磨器中,加少許丙三醇研磨,研磨越細(xì)越好;

          (2)將研細(xì)的Giemsa加丙三醇移入500ml棕色瓶內(nèi),丙三醇的總量為250ml,用一定量甲醇洗干凈研磨器。

          (3)搖勻,置60℃水浴鍋24小時或37℃溫箱72小時,經(jīng)常搖動。

          (4)取出冷卻后,加甲醇總量至250ml混勻,密封棕色瓶備用。貯藏時間越長,染色效果越好。

          2、實驗材料:

          中期染色體標(biāo)本;

          0.9%氯化鈉注射水;

          3%tris液體;

          0.25%胰蛋白酶;

          Gremsa染色液;

          蒸餾水;

          水浴鍋;

          立式染缸;

          定時器或時針;

          溫度計;

          鑷子及紗布;

          刻字筆;

          3、操作程序:

          (1)消化液配制:取0.9%氯化鈉注射水100ml,加0.25%胰蛋白酶1ml,制成0.025%胰蛋白酶鹽水消化液,加4-5滴tris液調(diào)PH6.8左右,移消化液于立式染色缸并置37℃水浴鍋中備用;

          (2)染液配制:取立式染缸,加蒸餾水500ml,加3滴tris液調(diào)PH并加入Giemea染液1ml左右,用吸管調(diào)勻備用;

          (3)漂洗液:取立式染缸一個,內(nèi)加蒸餾水備用;

          (4)試消化:待消化液溫度在37℃左右時,取同批標(biāo)本較多者標(biāo)本1張,分二節(jié)或三節(jié)進(jìn)行消化,每節(jié)相差十五秒左右,從45秒或60秒開始增減。取出后先在紗布或吸水紙上直立除去帶出胰蛋白酶,后置蒸餾水染缸內(nèi)漂洗,取出后,標(biāo)本斜面朝上,刮去染色缸內(nèi)染液上浮膜,沿槽插入,每分鐘移動1次,染色3-5分鐘。

          (5)洗片:從染色缸中取出標(biāo)本玻片,自來水沖洗,取刻編號面朝上用紗布干凈玻片背部染色,稍干,高倍鏡下觀片,確定分帶與染色時間。

          (6)分帶:取4張待分帶標(biāo)本玻片,細(xì)胞面朝左側(cè)按順序插入37℃的消化液中,消化時間較試消化選擇時間延長5-10秒鐘,取出每片間隔時間約10秒鐘左右。

          (7)消化及染色調(diào)整:每次消化完一批標(biāo)本后,需加入配好的消化液25ml于消化缸中,下次消化時間不變。同樣,每次染色一批標(biāo)本后加Giemsa染色液2-3滴,調(diào)勻,每次染色時間不變;

          (8)Giemsa染色調(diào)整:若Giemsa染色標(biāo)本偏紅,說明染色液偏酸,可加tris數(shù)滴調(diào)藍(lán),若Gremsa染色標(biāo)本偏藍(lán)則說明tris加多了;

          (9)保存:將分好帶的及觀察中的標(biāo)本及時收集于玻片盒內(nèi)保存,防止細(xì)胞涂面灰塵污染及擦損。

          注意:Giemsa消化染色過程中,有兩個重要的環(huán)節(jié),一是胰酶消化環(huán)節(jié),消化不足帶不出現(xiàn),消化過度染色體變得膨脹和不著色,必須把握好胰酶濃度、消化時間和消化溫度;二是預(yù)處理或老化環(huán)節(jié),對消化和帶型清晰度有很大影響,其中80℃2小時熱處理,是簡便易行和效果較好的辦法。

          (二)姐妹染色單體分化染色

          姐妹染色單體差別染色可使中期染色體顯示深淺不同的兩條單體,能借以觀察姐妹染色單體互換(SCE)現(xiàn)象。SCE是兩條染色單體在DNA合成中核苷酸序列發(fā)生互換而表現(xiàn)出來一種現(xiàn)象。即是細(xì)胞分裂是DNA同源重組的結(jié)果。SCE既是一種無害的變化(有生理波動),也可受射線、致突和致癌物三因素等作用而升高。SCE一定成度反映細(xì)胞的損傷與修復(fù)狀態(tài)。

          1、原理:

          在細(xì)胞培養(yǎng)過程中,加入一定是的5-溴脫氧尿苷(BudR ),當(dāng)細(xì)胞在DNA復(fù)制過程時,BudR能作為核苷酸的前體取代胸腺嘧啶而被摻入到新合DNA中。因此,當(dāng)細(xì)胞處于第二個分裂周期時,同一染色體的兩條姐妹染色單體,一條由雙股都含有BudR的DNA鏈構(gòu)成,而另一條為單股含有BudR的DNA鏈。在結(jié)構(gòu)上雙股含BudR的DNA螺旋化程度較低,故對染色劑親合力低,在用Giemsa染色時其單體著色淺,只有單股含BudR的DNA鏈組成的單體則著色深而形成差別著色。

          2、BudR貯存液的配制:

          BudR 5mg(先用0.5ml 1N NaOH溶解)

          然后加蒸餾水至 5ml

          即成1000ug/ml的貯存液,因BudR遇光會發(fā)生分解,貯存液需置棕色瓶并黑紙封瓶避光冰凍保存。

          3、實驗材料:

          所檢培養(yǎng)細(xì)胞;

          BudR貯存液;

          2×SSC液;

          常規(guī)染色體制片所需物品;

          水浴鍋;

          20W紫外燈一個;

          培養(yǎng)皿;

          鏡頭紙;

          4、操作程序

          (1)BudR摻入:細(xì)胞培養(yǎng)24小時后于培養(yǎng)液中加入BudR,最終濃度5-15mg/ml,避光條件下繼續(xù)培養(yǎng)。

          (2)終止培養(yǎng):待細(xì)胞經(jīng)歷兩個細(xì)胞周期(48小時),培養(yǎng)終止前3小時加秋水仙素,秋水仙素終濃度為0.02ug/ml培養(yǎng)液;

          (3)常規(guī)制片及烤片;

          (4)紫外燈照射:取標(biāo)本玻片置于大號培養(yǎng)皿內(nèi),正面朝上,上覆蓋鏡頭紙,從玻片外鏡頭紙邊沿加2×SSC液致使全鏡頭紙浸濕,移入50-60℃水浴鍋內(nèi),紫外線燈距離5cm,照射30-40分鐘;

          (5)染色:取出照射后標(biāo)本,蒸餾水沖洗,置PH6.8的2%Giemsa染色15分鐘;

          (6)洗片及存片:同G帶片

          注意:BudR是一種強突變劑,使用濃度不宜過高,否則會產(chǎn)生細(xì)胞毒性作用。

          (三)染色體脆性部位(fra)

          脆性位點也稱危性部位,是在一定的培養(yǎng)條件下人類染色體上某些特異位點非隨機地表現(xiàn)出的裂隙和斷裂。脆性部位分為普通型和罕見型兩大類。

          1、實驗材料

          (1)常規(guī)外周血所用物品。

          (2)培養(yǎng)基是用不含葉酸的MEM-Fra培養(yǎng)基或低葉酸的CT199培養(yǎng)基。

          2、培養(yǎng)液配制

          MEM-Fra 90-95%

          小牛血清 5-10%

          雙抗 100u/ml

          PH調(diào)至7.5左右

          3、操作程序

          與制備外周血的染色體方法相同。

          注:脆性X綜合癥:(FraX)

          這種染色體改變是在1969年被發(fā)現(xiàn),1977年被定位于Xq27、記錄為fra(X)(q),并命名為脆性部位。X連鎖智力低下(MR)與fra(X)(q27)密切相關(guān)。FraX的發(fā)生率占新生兒的1/2500;占X連鎖MR病1/2-1/3;占男性MR的1-2%;其發(fā)生率僅次于先天愚型。

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